酶標(biāo)板一般要比細(xì)胞培養(yǎng)板貴,細(xì)胞板主要做細(xì)胞培養(yǎng),但也可以用來(lái)測(cè)蛋白濃度;酶標(biāo)板包括包被板和反應(yīng)板,一般不能用做細(xì)胞培養(yǎng),它主要做免疫酶聯(lián)反應(yīng)后的蛋白檢測(cè),它需要更高的要求還需要特定的酶標(biāo)工作液。如下是個(gè)用酶標(biāo)板檢測(cè)冠狀病毒IgM/IgG抗體例子:
一、酶標(biāo)板的檢測(cè)操作步驟:
1.加樣品:將標(biāo)本稀釋液100ul(或2滴)加到包被板內(nèi)(預(yù)留陰陽(yáng)性及空白對(duì)照2-5孔),將待檢血清用PBS或生理鹽水按1:20稀釋后取10ul加入反應(yīng)孔內(nèi)。
2.加對(duì)照:加入陰性對(duì)照1-3孔,陽(yáng)性對(duì)照1孔,各100ul對(duì)照血清??瞻讓?duì)照1孔空置。
3.溫育:將反應(yīng)板震蕩使樣品混勻后,置37℃溫箱或水浴反應(yīng)20分鐘。
4.洗板:用蒸餾水將濃縮洗滌液15ml稀釋至300ml。
(1)手洗:將反應(yīng)板孔內(nèi)容物傾出,將洗滌液注滿反應(yīng)孔,放置30秒鐘后用力甩去,如此重復(fù)5次后拍干。
?。?)機(jī)洗:5次,每孔注入洗滌液200ul或注滿,停留30秒鐘后吸盡拍干。
5.加酶標(biāo)工作液:每孔加入100ul(或2滴)酶標(biāo)工作液,置37℃溫箱反應(yīng)20分鐘后,洗板5次,洗板操作同步驟4。
6.顯色和終止反應(yīng):將底物A、B液各50ul(或1滴)加到反應(yīng)孔內(nèi),37℃避光顯色10分鐘。每孔加入終止液50ul(或1滴)混勻終止反應(yīng)。
二、酶標(biāo)板的檢測(cè)結(jié)果判定:
1.酶標(biāo)儀設(shè)定波長(zhǎng)450nm,先用空白調(diào)零,然后測(cè)定各孔OD值;如果選用雙波長(zhǎng)測(cè)定,不必設(shè)置空白對(duì)照孔。
2.當(dāng)陰性對(duì)照平均OD值小于0.08,陽(yáng)性對(duì)照(pc)OD值大于0.30時(shí),說(shuō)明試劑盒有效且實(shí)驗(yàn)操作正確,否則應(yīng)當(dāng)重復(fù)試驗(yàn)。
3.臨界值(CUT—OFF VALUE)=0.15+陰性對(duì)照平均(NC)OD值(當(dāng)陰性平均OD值小于0.05時(shí),按0.05計(jì)算;當(dāng)陰性平均OD值大于或等于等于0.05時(shí)按實(shí)際值計(jì)算)。
4.標(biāo)本OD值≤臨界值為陰性,標(biāo)本OD值>臨界值為陽(yáng)性。
酶標(biāo)板經(jīng)表面改性處理后擁有帶正電荷的氨基,其疏水鍵由親水鍵取代。該類(lèi)酶標(biāo)板適合作為小分子蛋白的固相載體。使用合適的緩沖液和pH值,其表面可通過(guò)離子鍵與帶負(fù)電荷的小分子結(jié)合。由于其表面的親水特性和可通過(guò)其它交聯(lián)劑共價(jià)結(jié)合的能力,可用于固定溶于Triton-100、Tween 20等去污劑的蛋白分子。該類(lèi)板的缺陷為由于降低了疏水性,一部分蛋白分子無(wú)法結(jié)合;此外,其表面需有效地封閉。由于親水和共價(jià)的表面特性,使用的封閉液必須能夠與非反應(yīng)性氨基基團(tuán)和所選擇的交聯(lián)劑中任何功能基團(tuán)發(fā)生作用。